Salix babylonica una fuente de compuestos activos para el tratamiento de enfermedades inflamatorias en animales
Palabras clave:
Salix babylonica, efecto antiinflamatorio, neutrófilosResumen
El bienestar de los animales terrestres describe las expectativas de la sociedad sobre las condiciones que los animales deberían experimentar cuando están bajo el control humano. Estos principios incluyen que los animales deben estar libres de dolor, lesiones y enfermedades. La inflamación es el mecanismo de defensa de un huésped contra una infección bacteriana o viral, o una lesión física o química al huésped. Los metabolitos secundarios de las plantas son una alternativa eficaz para el tratamiento de enfermedades inflamatorias. El propósito de esta investigación fue evaluar la capacidad antiinflamatoria de un extracto hidroalcohólico de hojas de Salix babylonica (HESB) empleando el modelo de edema auricular inducido por TPA en ratones. El HESB mostró una buena actividad antiinflamatoria sin diferencia estadística significativa con el fármaco de referencia, indometacina. Por este motivo, se realizó una bipartición de HESB, obteniendo una fracción acuosa (AFSB) con actividad farmacológica leve (30.64 ± 3.03%) y una fracción orgánica (EAFSB) que mostró el mejor efecto antiinflamatorio (67.08 ± 7.15%). Anteriormente, identificamos los flavonoides antiinflamatorios luteolina y luteolosido como los componentes principales de EAFSB, por lo que el efecto antiinflamatorio de Salix babylonica puede ser atribuido a estos compuestos. Además, el análisis histopatológico mostró que las orejas de los ratones tratados con Salix babylonica suprimieron la infiltración de neutrófilos en el sitio de inflamación. Estos resultados apoyan el uso etnomédico de esta planta y evidencian el posible uso de Salix babylonica en el tratamiento del proceso inflamatorio en animales.
e2021-32
Citas
ABDEL WAHAB G, Sallam A, Elgaml A, Lahloub MF, Afifi MS. 2018. Antioxidant and antimicrobial activities of Salix babylonica extracts. World Journal of Pharmaceutical Sciences. 6(4):1–6. ISSN: 2321-3086.
https://www.wjpsonline.org/admin/uploads/Z3D48w.pdf
AHMED A, Shah W, Akbar S, Kumar D, Kumar V, Younis M. 2011. In-vitro anti inflammatory activity of Salix caprea linn. (goat willow) by HRBC membrane stabilization method. Journal of Pharmacy Research. 4(4):1067–1068. ISSN: 0974-6943. http://jprsolutions.info/newfiles/journal-file-56d274fdc5d1e9.78679338.pdf
AZAB A, Nassar A, Azab AN. 2016. Anti-inflammatory activity of natural products. Molecules. 21(10):1–19. ISSN:1420-3049. https://doi.org/10.3390/molecules21101321
AZIZ N, Kim MY, Cho JY. 2018. Anti-inflammatory effects of luteolin: a review of in vitro, in vivo, and in silico studies. Journal of Ethnopharmacology. 225 (May): 342–358. ISSN: 0378-8741. https://doi.org/10.1016/j.jep.2018.05.019
BROOM D. 2011. Animal Welfare: Concepts, Study Methods and Indicators. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias. 24(3):306–321. ISSN: 2256-2958. https://revistas.udea.edu.co/index.php/rccp/article/view/324688/20782027
CASTLE K, Gillin C, Hernandez S, Justice-Allen A, Lamberski N, Nichols M, Wolff P. 2016. Advances in animal welfare for free-living animals. Journal of Wildlife Diseases. 52(2): S4–S13. ISSN: 0090-3558. https://doi.org/10.7589/52.2S.S4
DRUMMOND EM, Harbourne N, Marete E, Martyn D, Jacquier JC, O’Riordan D, Gibney ER. 2013. Inhibition of proinflammatory biomarkers in THP1 macrophages by polyphenols derived from Chamomile, Meadowsweet and Willow Bark. Phytotherapy Research. 27(4): 588–594. ISSN: 1099-1573. https://doi.org/10.1002/ptr.4753
GONZÁLEZ-ALAMILLA EN, Gonzalez-Cortazar M, Valladares-Carranza B, Rivas-Jacobo MA, Herrera-Corredor CA, Ojeda-Ramírez D, Zaragoza-Bastida A, Rivero-Perez, N. 2019. Chemical Constituents of Salix Babylonica L. and Their Antibacterial Activity Against Gram-Positive and Gram-Negative Animal Bacteria. Molecules. 24 (16):2992. ISSN:1420-3049. https://doi.org/10.3390/molecules24162992
GUTIÉRREZ SD, Kuri SA, Martín-Herrera D. 2017. The bioguided fractionation and pharmacological activity of an endemic Salix canariensis species. Acta Pharmaceutica. 67(2):265–273. ISSN: 1846-9558. https://doi.org/10.1515/acph-2017-0012
GYAWALI R, Bhattarai P, Dhakal S, Jha B, Sharma S, Poudel PN. 2013. Analgesic and anti-inflammatory properties of Salix alba Linn and Calotropis procera (Aiton) Dryand. International Journal of Pharmaceutical & Biological Archives. 4(5):873–877. ISSN: 0976-3333. https://www.ijpba.info/ijpba/index.php/ijpba/article/view/1129
HERNÁNDEZ-VALLE E, Herrera-Ruiz M, Salgado GR, Zamilpa A, Ocampo MLA, Aparicio AJ, Tortoriello J, Jiménez-Ferrer E. 2014. Anti-inflammatory effect of 3-O-[(6’-O-palmitoyl)-β-D-glucopyranosyl sitosterol] from Agave angustifolia on ear edema in mice. Molecules. 19 (10): 15624–15637. ISSN: 1420-3049.
https://doi.org/10.3390/molecules191015624
KUMAWAT R, Sharma S, Vasudeva N, Kumar S. 2012. In vivo anti-inflamatory potential of various extracts of Sida tiagii Bhandari. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. 2(2SUPPL.):S947–S952. ISSN: 2221-1691. https://doi.org/10.1016/S2221-1691(12)60342-6
LAUDATO M, Capasso R. 2013. Useful plants for animal therapy. OA Alternative Medicine. 1 (1):1–6. ISSN: 2052-7845. https://doi.org/10.13172/2052-7845-1-1-327
LI L, Luo W, Qian Y, Zhu W, Qian J, Li J, Jin Y, Xu X, Liang G. 2019. Luteolin protects against diabetic cardiomyopathy by inhibiting NF-ΚB-mediated inflammation and activating the Nrf2-mediated antioxidant responses. Phytomedicine. 5:152774. ISSN: 0944-7113. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2018.11.034
MATHEWS K, Kronen PW, Lascelles D, Nolan A, Robertson S, Steagall PV, Wright B, Yamashita K. 2014. Guidelines for recognition, assessment and treatment of pain. Journal of Small Animal Practice. 6(3):164–173. ISSN: 224510.
https://doi.org/10.1111/jsap.12200
MAYER M, Vogl CR, Amorena M, Hamburger M, Walkenhorst M. 2014. Treatment of organic livestock with medicinal plants: a systematic review of European ethnoveterinary research. Forschende Komplementärmedizin = Research in complementary medicine. 21 (6): 375–386. ISSN: 1661-4127. https://doi.org/10.1159/000370216
MENDES DAGB, Soley B da S, Prudente A da S, Sponchiado G, Ferreira BGA, dos Santos MC, de Andrade ASM, Amorim C de M, Bresolin TMB, Meyre-Silva C.; et al. 2016. Hydroalcoholic extract of Sapium glandulatum (Vell.) Pax displays potent anti-inflammatory activities through a glucocorticoid receptor-dependent pathway. Phytomedicine. 23(13):1610–1620. ISSN: 0944-7113.
https://doi.org/10.1016/j.phymed.2016.10.003
MIARA MD, Bendif H, Ouabed A, Rebbas K, Ait Hammou M, Amirat M, Greene A, Teixidor-Toneu I. 2019. Ethnoveterinary remedies used in the Algerian steppe: exploring the relationship with traditional human herbal medicine. Journal of Ethnopharmacology. 44(August):112164. ISSN: 0378-8741. https://doi.org/10.1016/j.jep.2019.112164
OIE (World Organization for Animal Health). Animal welfare. https://www.oie.int/en/animal-welfare
PROPHET EB, Mills B, Arrington J, Sobón L. 1995. Métodos Histotecnológicos. Washington, DC, USA: Instituto de Patología de las Fuerzas Armadas de los Estados Unidos de América, Washington DC, Registro de Patología de los Estados Unidos de América (ARP) e Instituto de Patología de las Fuerzas Armadas de los Estados Unidos de América (AFIP). Pp. 280. ISBN: 1881041212 9781881041214.
RIVERO-PEREZ N, Ayala-Martinez M, Zepeda-Bastida A, Meneses-Mayo M, Ojeda-Ramirez D. 2016. Anti-inflammatory effect of aqueous extracts of spent Pleurotus ostreatus substrates in mouse ears treated with 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate. Indian Journal of Pharmacology. 48 (2):141–144. ISSN: 0253-7613. https://doi.org/10.4103/0253-7613.178826
SAS INSTITUTE. 2006. Statistical Analysis Software SAS/STAT®. Ver 9.0, Cary, N.C., USA: SAS Institute Inc., ISBN: 978-1-60764-599-3.
SHARMA S, Sahu D, Das HR, Sharma D. 2011. Amelioration of collagen-induced arthritis by Salix nigra bark extract via suppression of pro-inflammatory cytokines and oxidative stress. Food and Chemical Toxicology. 49(12):3395–3406. ISSN: 0278-6915. https://doi.org/10.1016/j.fct.2011.08.013
SILVA JB da, Mendes R de F, Tomasco V, Pinto N de CC, de Oliveira LG, Rodrigues M N, Aragão DM de O, Aguiar JAK de, Alves MS, Castañon MCNM.; et al. 2017. New aspects on the hepatoprotective potential associated with the antioxidant, hypocholesterolemic and anti-inflammatory activities of Vernonia condensata baker. Journal of Ethnopharmacology. 198:399–406. ISSN: 0378-8741.
https://doi.org/10.1016/j.jep.2017.01.039
STARLIN T, Saravana Prabha P, Thayakumar BKA, Gopalakrishnan VK. 2019. Screening and GC-MS profiling of ethanolic extract of Tylophora pauciflora. Bioinformation. 15 (6):425–429. ISSN: 0973-2063. https://doi.org/10.6026/97320630015425
VERMA RK. 2014. An ethnobotanical study of plants used for the treatment of livestock diseases in Tikamgarh district of Bundelkhand, Central India. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. 4(Supp 1): S460–S467. ISSN: 2221-1691.
https://doi.org/10.12980/APJTB.4.2014C1067
WAIZEL-BUCAY J. 2011. Plantas y compuestos importantes para la medicina: los sauces, los salicilatos y la aspirina. Revista de Fitoterapia. 11 (1): 61–75. ISSN: 1576-0952. https://www.fitoterapia.net/php/descargar_documento.php?id=4456&doc_r=sn&num_volumen=28&secc_volumen=5961
WEBB LE, Veenhoven R, Harfeld JL, Jensen MB. 2019. What Is Animal Happiness? Annals of the New York Academy of Sciences. 1438(1):62–76. ISSN: 1749-6632. https://doi.org/10.1111/nyas.13983
ZHANG BC, Li Z, Xu W, Xiang CH, Ma YF. 2018. Luteolin alleviates NLRP3 inflammasome activation and directs macrophage polarization in lipopolysaccharide-stimulated RAW264.7 cells. American Journal of Translational Research. 10 (1):265–273. ISSN: 1943-8141. http://www.ajtr.org/files/ajtr0067047.pdf