Presencia de Chlamydia abortus en cabras con historial de abortos en México
Palabras clave:
Chlamydia abortus, caprinos, abortosResumen
Chlamydia abortus causa abortos o nacimientos prematuros en rumiantes; adicionalmente, es una zoonosis que puede causar abortos o neumonías en personas que tienen contacto con animales enfermos o sus secreciones. El objetivo de este estudio fue aislar C. abortus de cabras mexicanas con historial de aborto y de cabras recién paridas con antecedentes de abortos; se recolectaron 186 muestras de 49 rebaños, en los estados de Coahuila, Jalisco, Puebla, Veracruz y Querétaro. El aislamiento bacteriano de las muestras clínicas fue realizado utilizando la línea celular de fibroblastos de ratón L929 y la identificación molecular se logró mediante la amplificación de un fragmento de 342 pb correspondiente a la región 16S-23S espaciador intergénico ribosomal RNA. Los productos de amplificación se secuenciaron y se compararon con la base de datos GenBank. El aislamiento identificó el 23.1% de las muestras y la PCR identificó el 9.6% como positivas. La búsqueda de homologías reveló una identidad del 100% con Chlamydia abortus EF486854, U76710, U68444, entre otras. La presencia de C. abortus se confirmó en cabras con antecedentes de aborto en México mediante aislamiento bacteriano, PCR y secuenciación. Estos hallazgos sugieren que C. abortus jugó un papel sustancial en cabras con antecedentes de aborto en México.
http://dx.doi.org/10.21929/abavet2021.26
e2021-2.
Citas
CAMPOS-HERNÁNDEZ E, Vázquez-Chagoyán JC, Salem AZ, Saltijeral-Oaxaca JA, Escalante-Ochoa C, López-Heydeck SM, de Oca-Jiménez RM. 2014. Prevalence and molecular identification of Chlamydia abortus in commercial dairy goat farms in a hot region in Mexico. Tropical Animal Health and Production. 46(6):919-924. https://doi.org/10.1007/s11250-014-0585-6
CHISU V, Porcu R, Tanda A, Masala G. 2013. First isolation and characterization of Chlamydophila abortus from abortion tissues of sheep in Sardinia, Italy. Veterinaria Italiana. 49(4):331-334. https://doi.org/10.12834/VetIt.1303.10
DOF (Diario oficial de la Federación). 2016. Acuerdo mediante el cual se dan a conocer en los Estados Unidos Mexicanos las enfermedades y plagas exóticas y endémicas de notificación obligatoria de los animales terrestres y acuáticos. 4 de mayo de 2016.
http://www.dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=5436016&fecha=04/05/2016
ESCALANTE OC, Díaz A, Segundo Z, Suárez G. 1997. Isolation of Chlamydia psittaci involved in abortion of goats in Mexico: First Report. Revista Latinoamericana de Microbiología. 39(3-4):117–121. PMID: 10932720. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10932720/
ESCALANTE OC, Lazcano A, Soberón M. 2001. Chlamydophila spp. Como agente zoónotico en México: Reporte de un caso. Abstracts of XXXVII Reunión Nacional de Investigación Pecuaria. Tuxtla Gutierréz, Chiapas, México. Pp. 41. ISSN: 24485284.
ESCALANTE OC, Rivera F, Trigo T, Romero M. 1996. Detection of Chlamydia psittaci in enteric subclinical infections in adult sheep through cell culture isolation. Revista Latinoamericana de Microbiología. 38(1):17–23. PMID: 8783901. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8783901/
EVERETT KD, Andersen AA. 1999. Identification of nine species of the Chlamydiaceae using PCR-RFLP. International Journal of Systematic Bacteriology. 49(2): 803–813. https://doi.org/10.1099/00207713-49-2-803
EVERETT KD, Andersen AA. 1997. The ribosomal intergenic spacer and domain I of the 23S rRNA gene are phylogenetic markers for Chlamydia spp. International Journal of Systematic Bacteriology. 47(2): 461-473. https://doi.org/10.1099/00207713-47-2-461
GUTIERREZ J, Williams EJ, O’Donovan J, Brady C, Proctor AF, Marques PX, Worrall S, Nally JE, McElroy M, Bassett HF, Sammin DJ, Markeya BK. 2011. Monitoring clinical outcomes, pathological changes and shedding of Chlamydophila abortus following experimental challenge of periparturient ewes utilizing the natural route of infection. Veterinary Microbiology. 147(1-2):119-126. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2010.06.015
JIMÉNEZ-ESTRADA JM, Escobedo-Guerra MR, Arteaga-troncoso G, López-hurtado M, De Haro-Cruz MDJ, Montes de Oca JR, Guerra-Infante FM. 2008. Detection of Chlamydophila abortus in Sheep (Ovis aries) in Mexico. American Journal of Animal and Veterinary Sciences. 3(4):91-95. https://thescipub.com/abstract/ajavsp.2008.91.95
KUMAR S, Stecher G, Tamura K. 2016. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution. 33(7):1870-1874. https://doi.org/10.1093/molbev/msw054
LAROUCAU K, Aaziz R, Vorimore F, Menard MF, Longbottom D, Denis G. 2018. Abortion storm induced by the live C. abortus vaccine 1B strain in a vaccinated sheep flock, mimicking a natural wild-type infection. Veterinary Microbiolology. 225:31-33. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2018.09.012
LAZCANO AC. 2006. Detección de Chlamydophila spp. en rebaños caprinos del Estado de Michoacán mediante técnica inmunodiagnóstica ELISA y aislamiento bacteriológico. Tesis de Licenciatura. Universidad Nacional Autónoma de México, CDMX, México.
LENZKO H, Moog U, Henning K, Lederbach R, Diller R, Menge C, Sachse K, Sprague LD. 2011. High frequency of chlamydial co-infections in clinically healthy sheep flocks. BMC Veterinary Research. 7(29). https://doi.org/10.1186/1746-6148-7-29
LIMÓN GMM, Favila HLC, Herrera LE, Lozano DRR, Meléndez SRM, Morales AJF, Díaz AE, Vitela MI, Córdova LD. 2011. Clamidofilosis en vacas lecheras con problemas reproductivos en Guanajuato y Aguascalientes: Resultados preliminares. Abstracts of XLVII Reunión Nacional de Investigación Pecuaria, Mérida, Yucatán, México. ISBN: 978-60-425-582-9.
LIVINGSTONE M, Wheelhouse N, Maley SW, Longbottom D. 2009. Molecular detection of Chlamydophila abortus in post-abortion sheep at oestrus and subsequent lambing. Veterinary Microbiology. 135(1-2):134-141. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2008.09.033
LONGBOTTOM D, Coulter LJ. 2003. Animal chlamydioses and zoonotic implications. Journal of Comparative Pathology. 128(4):217-244. https://doi.org/10.1053/jcpa.2002.0629
MELLADO M, Valdez R, Lara LM, Garcı́a JE. 2004. Risk factors involved in conception, abortion, and kidding rates of goats under extensive conditions. Small Ruminant Research. 55 (1-3):191-198. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2003.10.016
MORA DJC, Díaz AE, Herrera LE, Suárez GF, Escalante OC, Jaimes VS, and Arellano-Reynoso B. 2015. Isolation of Chlamydia abortus in dairy goat herds and its relation to abortion in Guanajuato, Mexico. Veterinaria Mexico OA. 2(1). https://doi.org/10.21753/vmoa.2.1.339
OIE (Organización mundial de sanidad animal). 2018. Manual terrestre de la OIE. Capítulo 3.7.5. Aborto enzoótico de las ovejas (Clamidiosis ovina) (Infección por Chlamydia abortus.
https://www.oie.int/fileadmin/Home/esp/Health_standards/tahm/3.07.05_Aborto_enz_ovejas.pdf
O'NEILL LM, Keane OM, Ross PJ, Nally JE, Seshu J, Markey B. 2019. Evaluation of protective and immune responses following vaccination with recombinant MIP and CPAF from Chlamydia abortus as novel vaccines for enzootic abortion of ewes. Vaccine. 37(36): 5428–5438. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.06.088
ORTEGA N, Caro MR, Gallego MC, Murcia-Belmonte A, Alvarez D, Del Rio L, Cuello F, Buendia AJ, Salinas J. 2015. Isolation of Chlamydia abortus from a laboratory worker diagnosed with atypical pneumonia. Irish Veterinary Journal. 69, 8. https://doi.org/10.1186/s13620-016-0067-4
PALOMARES REG, Mejía SP, Aguilar RF, De la Cruz CL, Jiménez SH, Leyva CJC, Morales PMI, Díaz AE. 2020. Frecuencia y factores de riesgo asociados a la presencia de Chlamydia abortus, en rebaños ovinos en México. Revista mexicana de ciencias pecuarias.11(3):783-794. ISSN 2428-6698. https://doi.org/10.22319/rmcp.v11i3.5269
PAPP JR, Shewen PE, Gartley CJ.1994. Abortion and subsequent excretion of Chlamydiae from the reproductive tract of sheep during estrus. Infection and Immunity. 62:3786-3792. PMID: 8063395. https://iai.asm.org/content/62/9/3786.short
PICHON N, Guindre L, Laroucau K, Cantaloube M, Nallatamby A, Parreau S. 2020. Chlamydia abortus in Pregnant Woman with Acute Respiratory Distress Syndrome. Emerging Infectious Diseases. 26(3): 628-629. https://doi.org/10.3201/eid2603.191417
RONQUIST F, Teslenko M, van der Mark P, Ayres DL, Darling A, Höhna S, Larget N, Liu L, Suchard MA, Huelsenbeck JP. 2012. MrBayes 3.2: Efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Systematic Biology. 61(3): 539-542. https://doi.org/10.1093/sysbio/sys029
SACHSE K, Vretou E, Livingstone M, Borel N, Pospischil A, Longbottom D. 2009. Recent developments in the laboratory diagnosis of chlamydial infections. Veterinary Microbiology. 135(1-2):2-21. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2008.09.040
SCHRADER C, Schielke A, Ellerbroek L, Johne R. 2012. PCR inhibitors - occurrence, properties and removal. Journal of Applied Microbiology. 113(5): 1014-1026. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2012.05384.x
RODOLAKIS A, Laroucau K. 2015. Chlamydiaceae and chlamydial infections in sheep or goats. Veterinary Microbiology. 181(1-2):107-118.
https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2015.07.010
SORIANO VE, Jiménez EJM, Salgado MC, López HM, Escobedo GMR, Guerra IFM. 2011. Identificación de Chlamydophila abortus en un aborto ovino en Almoloya de Juárez, México. Revista electrónica de veterinaria. 12(11): 1-6. http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=63622049007
STUEN S, Longbottom D. 2011. Treatment and control of chlamydial and rickettsial infections in sheep and goats. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 27(1):213-233. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2010.10.017
THEJLS H, Gnarpe J, Gnarpe H, Larsson PG, Platz-Christensen JJ, Ostergaard L, Victor A. 1994. Expanded gold standard in the diagnosis of Chlamydia trachomatis in a low prevalence population: diagnostic efficacy of tissue culture, direct immunofluorescence, enzyme immunoassay, PCR and serology. Genitourinary Medicine. 70 (5):300-303. https://sti.bmj.com/content/70/5/300
URRUTIA MJ, Vera AHR, Villagómez-Amezcua ME. 2015. “Aborto no infeccioso”. In: Díaz-Aparicio E, Tórtora-PÉREZ J, Palomares-Resendiz E, Gutiérrez-Hernández J. Enfermedades de las cabras. Mexico: INIFAP, SAGARPA. ISBN: 978-607-37-0411-3.
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