Incremento de la supervivencia de camarón blanco (Litopenaeus vannamei) infectado con el virus de la mancha blanca y alimentado con una dieta suplementada con aceite de coco (Cocos nucifera)
Palabras clave:
Cocos nucifera, Litopenaeus vannamei, ácidos grasos, WSSV, inmunoestimulantes, actividad antiviralResumen
El aceite de coco (Cocos nucifera) es considerado una sustancia inmunoestimulante natural que contiene compuestos bioactivos con la capacidad de regular o modificar la respuesta inmune e incrementar la resistencia contra agentes patógenos. Es por ello que el objetivo de esta investigación fue evaluar el aceite de C. nucifera suplementado en la dieta como potencial antiviral para reducir las mortalidades ocasionadas por el virus de la mancha blanca (WSSV) en el cultivo de camarón Litopenaeus vannamei. Se realizaron dos bioensayos con juveniles de camarón: el primero (20 días) consistió en alimentar con I) alimento comercial (AC); II) AC + 2.5 % de aceite de coco extra virgen (ACEV); III) AC + 5 % ACEV y el segundo bioensayo (27 días) con I) AC + WSSV; II) AC + 2.5 % ACEV + WSSV; III) AC y IV) AC + 2.5 % ACEV. Al final se determinó la tasa de crecimiento específico (TCE), la supervivencia, el conteo total de hemocitos (CTH) y únicamente en el bioensayo II se determinó la prevalencia del WSSV. Los resultados de TCE, CTH para ambos bioensayos no mostraron diferencias significativas entre tratamientos, al igual que la supervivencia en el bioensayo I. Sin embargo, si existieron diferencias significativas en la supervivencia del bioensayo II (p = 0.0030) entre el tratamiento I (83.3 %) y el resto de los tratamientos que presentaron supervivencias más altas. Se concluye que los resultados de prevalencia de WSSV del bioensayo II mostraron que la adición con 2.5 % de ACEV en el alimento presentó un efecto en la disminución de la prevalencia y la carga viral de WSSV en juveniles de L. vannamei, sin embargo, estos resultados no presentaron diferencias significativas con el resto de los tratamientos, no mostró efectos negativos en cuanto a la supervivencia y la TCE, así como tampoco se registró un efecto en el CTH entre los tratamientos de ambos bioensayos.
e2021-63
Citas
AFTABUDDIN S, Siddique MAM, Romkey SS, Shelton WL. 2017. Antibacterial function of herbal extracts on growth, survival and immunoprotection in the black tiger shrimp Penaeus monodon. Fish and Shellfish Immunology. 65: 52-58. ISSN:1050-4648. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.03.050
AKINNUGA AM, Jeje SO, Bamidele O, Amaku EE, Otogo FO, Sunday VE. 2014. Virgin Coconut Oil: Remedial Effects on Renal Dysfunction in Diabetic Rats. Physiology Journal. 1-5. ISSN: 1469-7793. https://doi.org/10.1155/2014/495926
ANGELES-AGDEPPA I, Nacis JS, Capanzana MV, Dayrit FM, Tanda KV. 2021. Virgin Coconut oil is effective in lowering C-reactive protein levels among suspect and probable cases of COVID-19. Journal of functional foods. (83). 104557. ISSN: 1756-4646. https://doi.org/10.1016/j.jff.2021.104557
APRAKU A, Liu L, Leng X, Rupia EJ, Ayisi CL. 2017. Evaluation of blended virgin Coconut oil and fish oil on growth performance and resistance to Streptococcus iniae challenge of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Egyptian Journal of Basic and Applied Sciences. 4 (3) 175-184. ISSN:2313-808X. https://doi.org/10.1016/j.ejbas.2017.06.002
BARRACCO MA, Perazzolo LM, Rosa RD. 2014. Avances en la Inmunología del Camarón. In: Morales V, Cuéllar-Anjel J. (Eds.). Guía Técnica Patología e Inmunología de Camarones Penaeidos. OIRSA, Panamá, Rep. de Panamá. Pp. 237-306. ISBN: 978-9962-661-02-3. https://utm.edu.ec/fcv/acuicultura/images/acuicultura/pdf_revistas/Guia_Tecnica_Patologia_Inmunologia_de_Camarones_Penaeidos.pdf
BERGER C. 2019. Aportes de la bio-tecnología a la alimentación y a la inmunoestimulación de camarones peneidos. Avances En Nutrición Acuícola. Pp. 19-22. https://nutricionacuicola.uanl.mx/index.php/acu/article/view/268/266
BOYD CE. 2001. Consideraciones Sobre La Calidad Del Agua y Suelo en Cultivos de Camarón En Haws, MC, Boy CE (eds). Métodos para mejorar la camaronicultura en Centroamérica. Editorial-Imprenta UAC, Managua, Nicaragua. 1ra Edición. Pp 1-30.
BRICKNELL I, Dalmo RA. 2005. The use of immunostimulants in fish larval aquaculture. Fish and shellfish immunology. 19(5): 457-472. ISSN: 1050-4648.
https://doi.org/10.1016/j.fsi.2005.03.008
BROCK JA, Main, KA. 1994. Guide to the common problems and diseases of cultured Penaeus vannamei. The Oceanic Institute, Honolulu, EUA. Pp 242. ISBN: 1886608008.
CABRERA E, Marcelo Z, Reyes W, Azañero C. 2019. Efecto de dietas con alta concentración de Saccharomyces cerevisiae sobre la proliferación de hemocitos en camarones Cryphiops caementarius machos. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. 30 (3): 1057-1067. ISSN: 1609-9117. http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v30i3.16733
CAHU C, Guillaume JC, Stéphan G, Chim L. 1994.Influence of phospholipid and highly unsaturated fatty acids on spawning rate and egg and tissue composition in Penaeus vannamei fed semi-purified diets. Aquaculture. 126(1-2): 159-170. ISSN: 0044-8486. https://doi.org/10.1016/0044-8486(94)90257-7
DAYRIT CS. 2000. Coconut oil in health and disease: its and monolaurin's potential as cure for HIV/AIDS. 31(4): 19-24. https://doi.org/0.1.1.554.2770
DEBMANDAL M, Mandal S. 2011. Coconut (Cocos nucifera L.: Arecaceae): in health promotion and disease prevention. Asian Pacific journal of tropical medicine. 4(3):241-247. ISSN:1995-7645. https://doi.org/10.1016/S1995-7645(11)60078-3
ELSBAEY M, Ibrahim MA, Bar FA, Elgazar AA. 2021. Chemical constituents from coconut waste and their in silico evaluation as potential antiviral agents against SARS-CoV-2. South African Journal of Botany. (141): 278-289. ISSN: 0254-6299.
https://doi.org/10.1016/j.sajb.2021.05.018
ESCOBAR GC, Pachamoro LM, Reyes AW. 2017. Supervivencia y crecimiento de machos adultos del camarón de río Cryphiops caementarius Molina, 1782 (Crustacea, Palaemonidae) expuestos a salinidades. Ecología Aplicada.16 (2): 75-85. ISSN:1726-2216. http://dx.doi.org/10.21704/rea.v16i2.1010
ESPARZA LHM, Escobedo BCM, Casillas HR, Álvarez RP, Portillo CG, Valerio GR. C, Magallón BFJ. 2009. Detection of white spot syndrome virus in filtered shrimp-farm water fractions and experimental evaluation of its infectivity in Penaeus (Litopenaeus) vannamei. Aquaculture. 292:16-22. ISSN: 0044-8486.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.03.021
ESQUENAZI D, Wigg MD, Miranda MMFS, Rodrigues HM, Tostes JBF, Rozental S, Alviano CS. 2002. Antimicrobial and antiviral activities of polyphenolics from Cocos nucifera Linn. (Palmae) husk fiber extract. Research in Microbiology. 153 (10): 647-652. ISSN: 0944-501. https://doi.org/10.1016/S0923-2508(02)01377-3
FAO (Organización de las naciones unidad para la alimentación y la agricultura). 2018. El estado mundial de la pesca y la acuicultura. Cumplir los objetivos de desarrollo sostenible. Roma: Organización de las Naciones Unidas. ISBN 978-92-5-130688-8. http://www.fao.org/3/i9540es/i9540es.pdf
FIFE B. (2013). El milagro del aceite de coco. Agro Food Industry Hi-Tec. 24(3): 7-10. ISNB: 9788478087136.
FISHER W, Krupp F, Schneider W, Sommer C, Carpenter KE, Niem VH. 1995. Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca: Pacífico Centro-Oriental. Roma, Italia. (3). ISBN 92-5-303409-2. https://decapoda.nhm.org/pdfs/29676/29676.pdf
FLEGEL TW, Alday SV. 1998. The crisis in Asian shrimp aquaculture: current status and future needs. Jornal of Applied Ichthyology. 14 (3-4): 269-273. ISSN:1439-0426.
https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.1998.tb00654.x
FONT H, Torres V, Herrera M, Rodríguez R. 2007. Cumplimiento de la normalidad y homogeneidad de la varianza en frecuencias de medición acumulada de la variable producción de huevos en gallinas White Leghorn. Revista Cubana de Ciencia Agrícola. 41(3). ISSN: 0034-7485. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=193017693002
http://www.cesasin.com.mx/CentroAmerica/10%20Practicas%20de%20manejo.pdf
HUYNH TG, Yeh ST, Lin YC, Shyu JF, Chen LL, Chen JC. 2011. White shrimp Litopenaeus vannamei immersed in seawater containing Sargassum hemiphyllum var. chinense powder and its extract showed increased immunity and resistance against Vibrio alginolyticus and white spot syndrome virus. Fish and Shellfish Immunology. 31(2): 286-293. ISSN: 1050-4648. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2011.05.014
JIANG YS, Zhan WB, Wang SB, Xing J. 2006. Development of primary shrimp hemocyte cultures of Penaeus chinensis to study white spot syndrome virus (WSSV) infection. Aquaculture. 253: 114-119. ISSN: 0044-8486.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.07.045
KAPILAN N, Reddy RP. 2007. Evaluation of Methyl Esters of Mahua Oil (Madhuca Indica) as Diesel Fuel. Journal of the American Oil Chemists’ Society. 85 (2): 185-188. ISSN: 1558-9331. https://doi.org/10.1007/s11746-007-1179-5
KIMURA T, Yamano K, Nakano H, Momoyama K, Hiraoka M, Inouye K. 1996. Detection of penaeid rod-shaped DNA virus (PRDV) by PCR. Fish Pathology. 31(2): 93-98. ISSN: 1881-7335. https://doi.org/10.3147/jsfp.31.93
LIEBERMAN S, Enig MG, Preuss HG. 2006. A Review of Monolaurin and Lauric Acid: Natural Virucidal and Bactericidal Agents. Alternative and Complementary Therapies. 12(6): 310-314. ISSN: 1557-9085. https://doi.org/10.1089/act.2006.12.310
LÓPEZ MSG. 2020. Efecto del aceite vegetal (canola) y animal (sardina y salmón) en el alimento sobre la expresión transcripcional del camarón blanco Penaeus vannamei. Tesis de maestría. Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste. La Paz, Baja California Sur, México. Pp 97. https://cibnor.repositorioinstitucional.mx/jspui/handle/1001/1865
LU Y, Jin M, Yuan Y, Xiong J, Ma H, Zhou Q. 2018. Effects of different lipid sources on growth performance, body composition, the serum biochemical indices, fatty acids composition and antioxidant capacity in juvenile yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Journal of Fisheries of China. 42 (7): 1094-1110. ISSN:1000-0615.
https://doi.org/10.11964/jfc.20170310739
MARGOLIS L, Esch GW, Holmes JC, Kuris AM, Schad GA 1982. The use of ecological terms in parasitology (report of an ad hoc committee of the American Society of Parasitologists). Journal of Parasitology. 68 (1): 131-133 ISSN: 0022-3395.
https://doi.org/10.2307/3281335
MARKS H. 2005. Genomics and transcriptomics of white spot syndrome virus. Wageningen University. Promotor(en): Just Vlak; R.W. Goldbach, co-promotor (en): M.C.W. van Hulten. Wageningen. Pp 160. ISBN: 90-8504-318-2.
https://library.wur.nl/WebQuery/wurpubs/fulltext/121730
MARTÍNEZ CL, Martínez PM, López EJA, Enríquez OLF. 2014. Uso de microorganismos en el cultivo de crustáceos. Biotecnia.16 (3): 50-55. ISSN: 1665-1456.
https://doi.org/10.18633/bt.v16i3.141
MONTOYA Ballesteros LC. 2021. Compuestos bioactivos en coco (Cocos nucifera L.). Efecto del cultivar y región de cultivo. Biotecnia. 23(2):22-29. ISSN:1665-1456. https://doi.org/10.18633/biotecnia.v23i2.1336
MOZANZADEH MT, Marammazi JG, Yavari V, Agh N, Mohammadian T, Gisbert E. 2015. Dietary n3 LC-PUFA requirements in silvery-black porgy juveniles (Sparidentex hasta). Aquaculture. ISSN: 0044-8486 448: 151-161.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.06.007
MURRAY M. 1994. Natural alternative to Over-the Counter and prescription Drugs. Nueva York: William Morrow. Pp 357. ISBN: 0-688-12358-9.
NEVIN KG, Rajamohan T. 2009. Wet and dry extraction of coconut oil: impact on lipid metabolic and antioxidant status in cholesterol coadministered rats. Canadian journal of physiology and pharmacology. 87 (8): 610-616. ISSN: 1205-7541.
https://doi.org/10.1139/Y09-045
NIU J, Xie SW, Fang HH, Xie JJ, Guo TY, Zhang YM, Liu YJ. 2018. Dietary values of macroalgae Porphyra haitanensis in Litopenaeus vannamei under normal rearing and WSSV challenge conditions: Effect on growth, immune response and intestinal microbiota. Fish and Shellfish Immunology. 81: 135-149. ISSN: 1050-4648.
https://doi.org/10.1016/j.fsi.2018.06.010
NOM (Norma Oficial Mexicana NOM-051-SCFI/SSA1-2010), Especificaciones generales de etiquetado para alimentos y bebidas no alcohólicas preenvasados-Información comercial y sanitaria.
https://www.dof.gob.mx/normasOficiales/4010/seeco11_C/seeco11_C.htm
NOM (Norma Oficial Mexicana, NOM-062-ZOO-1999) de especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio. México. http://dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=764738&fecha=18/06/2001
NOM (Norma Oficial Mexicana, NOM-086-SSA1-1994). Bienes y Servicios. Alimentos y bebi-das no alcohólicas con modificaciones en su composición. Especificaciones Nutrimentales. Secretaría de Salud. México.
https://www.dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=4890075&fecha=26/06/1996
OIE (Organización mundial de sanidad animal). 2019. Manual de las Pruebas de Diagnóstico para los Animales Acuáticos. En capítulo 2.2.8. Infección por el virus del síndrome de las manchas blancas. Pp 1-16. https://www.oie.int/es/que-hacemos/normas/codigos-y-manuales/acceso-en-linea-al-manual-acuatico/
OYI AR, Onaolapo JA, Obi RC. 2010. Formulation and antimicrobial studies of coconut (Cocos nucifera Linne) oil. Research Journal of Applied Sciences, Engineering and Technology. 2 (2): 133-137. ISSN: 2040-7467.
https://www.researchgate.net/publication/285568592
PATIL PK, Geetha R, Ravisankar T, Avunje S, Solanki HG, Abraham TJ, Vijayan KK. 2020. Economic loss due to diseases in Indian shrimp farming with special reference to Enterocytozoon hepatopenaei (EHP) and white spot syndrome virus (WSSV). Aquaculture. (533): 736231. ISSN: 0044-8486.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.736231
RAA J. 1996. The use of immunostimulatory substances in fish and shellfish farming. Reviews in Fisheries Science. 4(3): 229-288. ISSN: 1547-6553.
https://doi.org/10.1080/10641269609388587
RENDON L, Balcazar JL. 2003. Inmunología de camarones: Conceptos básicos y recientes avances. Revista AquaTIC. 19:27-33. ISSN: 1578-4541.
http://www.revistaaquatic.com/ojs/index.php/aquatic/article/view/256/244
RUIZ NB, Dijck BDAJ, Muskiet FAJ. 2016. The relation of saturated fatty acids with low-grade inflammation and cardiovascular disease. The Journal of Nutritional Biochemistry. 36: 1-20. ISSN: 0955-2863. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2015.12.007
SAHUL HAS, Sarathi M, Sudhakaran R, Balasubramanian G, Syed S. 2006. Quantitative assessment of apoptotic hemocytes in white spot syndrome virus (WSSV)-infected penaeid shrimp, Penaeus monodon and Penaeus indicus, by flow cytometric analysis. Aquaculture. 256(1-4): 111-120. ISSN: 0044-8486.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2006.02.054
SENASICA (Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria. 2003. Manual de Buenas Prácticas de Producción de Acuícola de Camarón para la Inocuidad Alimentaria. Pp 95. ISBN: 968-5384-04-5. https://cesasin.mx/wp-content/uploads/2017/12/Cam-Manual-de-buenas-practicas-de-produccio%CC%81n-acuicola-de-camaro%CC%81n-para-la-inocuidad-alimentaria.pdf
SEQUEIRA T, Tavares D, Arala Chaves M. 1996. Evidence for circulating hemocyte proliferation in the shrimp Penaeus japonicus. Developmental and Comparative Immunology. 20(2): 97-104. ISSN: 0145-305X.
https://doi.org/10.1016/0145-305X(96)00001-8
SÖDERHÄLL I, Bangyeekhun E, Mayo S, Söderhäll K. 2003. Hemocyte production and maturation in an invertebrate animal; proliferation and gene expression in hematopoietic stem cells of Pacifastacus leniusculus. Developmental and Comparative Immunology. 27(8): 661-672. ISSN: 0145-305X. https://doi.org/10.1016/S0145-305X(03)00039-9
STATSOFT INC. 2003. Statistica (Data Analysis Software System), versión 06. www.statsoft.com
TURCHINI GM, Francis DS, Senadheera SPSD, Thanuthong T, De Silva, SS. 2011. Fish oil replacement with different vegetable oils in Murray cod: evidence of an “Omega-3 sparing effect” by other dietary fatty acids. Aquaculture. 315 (3-4): 250-259. ISSN: 0044-8486. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.02.016
TURCHINI GM, Torstensen BE, Ng WK. 2009. Fish oil replacement in finfish nutrition. Reviews in Aquaculture. 1(1): 10-57. ISSN: 1753-5131. https://doi.org/10.1111/j.1753-5131.2008.01001.x
VARELA MA, Peña NN, Aranguren CLF. 2017. Necrosis aguda del hepatopáncreas: una revisión de la enfermedad en Penaeus vannamei. Agronomía Mesoamericana. 28 (3): 735-745. ISSN: 2215-3608. http://doi.org/10.15517/ma.v28i3.27788
VARGAS AF, Guzmán MA, Ochoa JL. 1993. A lipopolysaccharide-binding agglutinin isolated from brown shrimp (Penaeus californiensis Holmes) haemolymph. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Comparative Biochemistry. 104(2): 407-413. ISSN: 0305-049. https://doi.org/10.1016/0305-0491(93)90387-K
WANG CS, Tang KFJ, Kou GH, Chen SN. 1997. Light and electron microscopic evidence of white spot disease in the giant tiger shrimp, Penaeus monodon (Fabricius), and the kuruma shrimp, Penaeus japonicus (Bate), cultured in Taiwan. Journal of Fish Diseases. 20(5): 323-331. ISSN: 0140-7775. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.1997.00301.x
ZIAEI NS, Rezaei MH, Takami GA, Lovett DL, Mirvaghefi AR, Shakouri M. 2006.The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp Fenneropenaeus indicus. Aquaculture. 252(2-4): 516-524. ISSN: 0044-8486. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.07.021
